凯氏定氮法 网上没找到 ,就自己打了一份
饲料中纯蛋白质(真蛋白)的测定
一 、测定原理
饲料蛋白质经沸水提取并在碱性溶液中被硫酸铜沉淀 。过滤和洗涤后,可将纯蛋白质和非蛋白质含氮物分离,再用凯氏定氮法测定沉淀物中的蛋白质含量。
二、仪器设备
(1)烧杯:200ml
(2)定型滤纸
(3)其他设备与粗蛋白质测定法相同
三、试剂与配制
(1)100g.L-1硫酸铜溶液;分析纯硫酸铜(5水硫酸铜)10g溶于100ml水中
(2)25g.L-1氢氧化钠溶液:将2.5g分析纯氢氧化钠溶于100ml水中
(3)10g.L-1氯化钡溶液:1g氯化钡溶于100ml水中
(4)2mol.L盐酸溶液
(5)其他试剂与粗蛋白质测定法相同
四 、测定步骤
准确称取试样1g左右(精确至0.0001g)置于200ml烧杯中 ,加50ml水中,加热至沸。
加入20ml硫酸铜溶液,20ml氢氧化钠溶液,用玻璃棒充分搅拌 ,放置1h以上 。用定性滤纸过滤,然后用60~80摄氏度热水洗涤沉淀5或6次,用氯化钡溶液5滴和盐酸溶液1滴检查滤纸 ,直至不生成白色硫酸钡沉淀为止。将沉淀和滤纸放在65摄氏度烘箱干燥2h,然后全部转移到凯氏烧瓶中,按半微量凯氏定氮法进行氮的测定。
植物全氮、磷、钾的测定?
凯氏定氮法
蛋白质测定的国标规定方法——凯氏定氮法介绍
GB/T 5009.5—1985
食品中蛋白质的测定方法
本标准适用于各类食品中蛋白质的测定.
1 原理
蛋白质是含氮的有机化合物.食品与硫酸和催化剂一同加热消化,使蛋白质分解,分解的氨与硫酸结合生成硫酸铵.然后碱化蒸馏使氨游离,用硼酸吸收后再以硫酸或盐酸标准溶液滴定,根据酸的消耗量乘以换算系数,即为蛋白质含量.
2 试剂
所有试剂均用不含氨的蒸馏水配制.
2.1 硫酸铜.
2.2 硫酸钾.
2.3 硫酸.
2.4 2%硼酸溶液.
2.5 混合指示液:1份0.1%甲基红乙醇溶液与5份0.1%溴甲酚绿乙醇溶液临用时混合.也可用2份0.1%甲基红乙醇溶液与1份0.1%次甲基蓝乙醇溶液临用时混合.
2.6 40%氢氧化钠溶液.
2.7 0.05N硫酸标准溶液或0.05N盐酸标准溶液.
3 仪器
定氮蒸馏装置:如图所示.
(图略)
4 操作方法
4.1 样品处理:精密称取0.2.0g固体样品或2~5g半固体样品或吸取10~20ml液体样品(约相当氮30~40mg),移入干燥的 100ml或500ml定氮瓶中,加入0.2g硫酸铜,3g硫酸钾及20ml硫酸,稍摇匀后于瓶口放一小漏斗,将瓶以45°角斜支于有小孔的石棉网上.小心加热,待内容物全部炭化,泡沫完全停止后,加强火力,并保持瓶内液体微沸,至液体呈蓝绿色澄清透明后,再继续加热0.5h.取下放冷,小心加20ml 水.放冷后,移入100ml容量瓶中,并用少量水洗定氮瓶,洗液并入容量瓶中,再加水至刻度,混匀备用.取与处理样品相同量的硫酸铜、硫酸钾 、硫酸按同一方法做试剂空白试验.
4.2 按图装好定氮装置,于水蒸气发生瓶内装水至约2/3处,加甲基红指示液数滴及数毫升硫酸,以保持水呈酸性,加入数粒玻璃珠以防暴沸,用调压器控制,加热煮沸水蒸气发生瓶内的水.
4.3 向接收瓶内加入10ml 2%硼酸溶液及混合指示液1滴,并使冷凝管的下端插入液面下,吸取10.0ml样品消化稀释液由小玻杯流入反应室,并以10ml水洗涤小烧杯使流入反应室内,塞紧小玻杯的棒状玻塞.将10ml 40%氢氧化钠溶液倒入小玻杯,提起玻塞使其缓缓流入反应室,立即将玻塞盖紧,并加水于小玻杯以防漏气.夹紧螺旋夹,开始蒸馏.蒸气通入反应室使氨通过冷凝管而进入接收瓶内,蒸馏5min.移动接受瓶,使冷凝管下端离开液面,再蒸馏1min.然后用少量水冲洗冷凝管下端外部.取下接收瓶,以0.05N硫酸或0.05N盐酸标准溶液滴定至灰色或蓝紫色为终点.
同时吸取10.0ml试剂空白消化液按4.3操作.
4.4 计算
式中:X——样品中蛋白质的含量,%;
V1——样品消耗硫酸或盐酸标准液的体积,ml;
V2——试剂空白消耗硫酸或盐酸标准液的体积,ml;
N——硫酸或盐酸标准溶液的当量浓度;
0.014——1N硫酸或盐酸标准溶液1ml相当于氮克数;
m——样品的质量(体积),g(ml);
F——氮换算为蛋白质的系数.蛋白质中的氮含量一般为15~17.6%,按16%计算乘以6.25即为蛋白质,乳制品为6.38,面粉为5.70,玉米、高粱为6.24,花生为5.46,米为5.95,大豆及其制品为5.71,肉与肉制品为6.25,大麦、小米 、燕麦、裸麦为5.83,芝麻、向日葵为 5.30.
附加说明:
本标准由全国卫生标准技术委员会食品卫生标准分委员会提出,由卫生部食品卫生监督检验所归口.
本标准由卫生部食品卫生监督检验所负责起草.
一 、植株全氮的测定
1.方法原理
植株样品用浓硫酸加双氧水消煮 ,使有机氮转化为铵盐。铵盐经碱化后形成氨,经蒸馏将氨吸收到硼酸溶液中 。以甲基红—溴甲酚绿为指示剂,用标准酸滴定 ,测定植株中的全氮含量(不包括全部硝态氮)。
2.分析步骤
2.1 试样溶液制备
称取试样0.5g,精确至0.001g,置于50ml消煮管(5.1)中(勿将样品粘附在瓶颈上)。先滴入少些水湿润样品 ,然后加8mL硫酸(4.1),轻轻摇匀并放置过夜 。在管口放一弯颈小漏斗(5.3),在消煮炉上先250℃消煮(温度稳定后计时,时间约30min) ,待H2SO4分解冒出大量白烟后再升高温度至400℃,当溶液呈均匀的棕黑色时取下。(时间约3h),稍冷后加10滴H2O2(注1) ,摇匀,再加热至微沸(注2),消煮约5min ,取下稍冷后,重复加H2O2 5-10滴,再消煮。如此重复3-5次 ,每次添加的H2O2的量应逐次减少,消煮到溶液呈无色或清亮后(应该为水的颜色),再加热约5-10min ,以除尽剩余的H2O2 。将消煮管取下,冷却。并用少量水冲洗弯颈漏斗,洗液流入消煮管。将消煮液无损的洗入100mL容量瓶中,用水定容 ,摇匀 。过滤或放置澄清后供氮的测定。
2.2 空白试验
除不加试样外,试剂用量和操作与测定试样时相同。
2.3 测定
2.31蒸馏前将配制好的氢氧化钠(4.3),硫酸标准液(4.6) ,混合指示剂(4.5),对定氮仪进行充分预热,进行空蒸镏清洗管道 ,直至读数稳定 。
2.32 吸取上述待测液10.00mL(含NH4—N约1mg),注入凯氏定氮仪蒸馏管中,参数设置后 ,对待测液进行测定,其中加碱时间应设为3S。
二、植物全磷的测定
1.方法原理
物样品经硫酸-过氧化氢消煮使各种形态的磷转变成正磷酸。待测液中的正磷酸与偏钒酸和钼酸能生成**的三元杂多酸,其吸光度与磷浓度成正比,可在波长400~490nm处用吸光光度法测定。磷浓度较高时选用较长的波长,较低时选用较短波长 。
2.分析步骤
2.1试样溶液制备
称取试样0.5g,精确至0.001g ,置于50ml消煮管(5.1)中(勿将样品粘附在瓶颈上)。先滴入少些水湿润样品,然后加8mL硫酸(4.1),轻轻摇匀并放置过夜。在管口放一弯颈小漏斗(5.3),在消煮炉上先250℃消煮(温度稳定后计时 ,时间约30min),待H2SO4分解冒出大量白烟后再升高温度至400℃,当溶液呈均匀的棕黑色时取下 。(时间约3h) ,稍冷后加10滴H2O2(注1),摇匀,再加热至微沸(注2) ,消煮约5min,取下稍冷后,重复加H2O2 5-10滴 ,再消煮。如此重复3-5次,每次添加的H2O2的量应逐次减少,消煮到溶液呈无色或清亮后(应该为水的颜色) ,再加热约5-10min,以除尽剩余的H2O2。将消煮管取下,冷却 。并用少量水冲洗弯颈漏斗,洗液流入消煮管。将消煮液无损的洗入100mL容量瓶中 ,用水定容,摇匀。过滤或放置澄清后供磷的测定 。
2.2 空白溶液制备
除不加试样外,应用的试剂和操作步骤同2.1。
2.3 标准曲线绘制
吸取磷标准溶液(4.7)0 ,1.00,2.50,5.00 ,7.00,10.00,12.50 ,15.00mL分别置于8个50mL容量瓶中,加入与吸取试样溶液等体积的空白溶液,加水至30mL左右 ,加2滴二硝基酚指示剂(4.6),用氢氧化钠溶液(4.5)和硫酸(4.8)调节溶液呈微**,加10mL钒钼酸铵溶液(4.4)摇匀,用水定容。此溶液磷含量为0, 1.00, 2.50 , 5.00, 7.50, 10.00, 12.50 ,15.00 mg/L的标准溶液系列 。在室温15℃以上条件下放置20min后(最长不超过4h),在分光光度计波长440nm处用1cm光径比色皿,以空白溶液调节仪器零点 ,进行比色,读取吸光度。根据磷浓度和吸光度绘制标准曲线或求出直线回归方程。
2.4 准确吸取定容,过滤或澄清后的消煮液10.00ml放入50ml容量瓶中,加水至30mL左右 ,
与标准系列同条件显色、比色,读取吸光度。
三 、植物全钾的测定
1.方法原理
植株样品经硝酸、高氯酸消煮后,消化液中的钾用火焰分光光度计测定 。火焰分光光度法是利用火焰做激发源 ,使钾原子激发。根据激发出能量的大小测定钾素的含量。
2.分析步骤
2.1试样溶液制备
称取试样0.5g,精确至0.001g,置于50ml消煮管(5.1)中(勿将样品粘附在瓶颈上) 。先滴入少些水湿润样品 ,然后加8mL硫酸(4.1),轻轻摇匀并放置过夜。在管口放一弯颈小漏斗(5.3),在消煮炉上先250℃消煮(温度稳定后计时,时间约30min) ,待H2SO4分解冒出大量白烟后再升高温度至400℃,当溶液呈均匀的棕黑色时取下。(时间约3h),稍冷后加10滴H2O2(注1) ,摇匀,再加热至微沸(注2),消煮约5min ,取下稍冷后,重复加H2O2 5-10滴,再消煮 。如此重复3-5次 ,每次添加的H2O2的量应逐次减少,消煮到溶液呈无色或清亮后(应该为水的颜色),再加热约5-10min ,以除尽剩余的H2O2。将消煮管取下,冷却。并用少量水冲洗弯颈漏斗,洗液流入消煮管 。将消煮液无损的洗入100mL容量瓶中,用水定容 ,摇匀。过滤或放置澄清后供钾的测定。
2.2空白溶液制备
除不加试样外,应用的试剂和操作步骤同2.1 。
2.3 标准曲线绘制
准确吸取钾标准溶液(4.3)0, 1.00, 2.50, 10.00, 20.00 ml, 分别放入50mL容量瓶中, 加入与吸取试样溶液等体积的空白溶液,(使标准溶液中的离子成分和待测液相近),加水定容。即得0, 2, 5, 10, 20, 40 mg/L K标准系列溶液。在火焰光度计上 ,以浓度最高的标准溶液定火焰光度计检流计的满度(一般只定到90),以空白溶液调节仪器零点,然后从稀到浓依次进行测定,记录检流计读数,以检流计读数为纵坐标,钾浓度为横坐标绘制校准曲线或求直线回归方程。
2.4 测定
吸取定容后的消煮液10.00mL放入50mL容量瓶中,用水定容,直接在火焰光度计上测定,读取检流计读数 ,每5个样品必须用钾标准溶液校正仪器 。
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